沒有ct值
檢測結果遇到?jīng)]有Ct值情況，排查是否有以下問題：
1、循環(huán)數(shù)不夠（一般不超過45循環(huán)，不僅背景值提高，定量也不準）；
2、PCR程序設置錯誤，檢測熒光信號的步驟有誤。一般SG法采用72℃延伸時采集，TaqMan法則一般在退火結束時或延伸時采集信號，另外熒光采集是否選中；
3、引物或探針降解?？赏ㄟ^PAGE電泳檢測引物和探針是否降解；
4、模板量可能降解或上樣量不足（不超過500ng，根據(jù)試劑盒說明書即可），對未知濃度的樣本應從系列稀釋樣本的高濃度做起；如果發(fā)生模板降解，應考慮樣本準備中雜質的引入及反復凍融的情況，建議將模板樣本小量分裝儲備，避免反復凍融；
5、引物探針是否合適（尤其是引物跨越內含子，以確保擴增基因組DNA；上下游引物Tm值超過4℃以上也會影響擴增）。

標準曲線不佳
標準曲線線性關系不佳R2<0.9），很有可能是以下環(huán)節(jié)存在問題：
1、標準品稀釋或者加樣誤差，使得標準品不呈梯度；
2、標準品出現(xiàn)降解。應避免標準品反復凍融，將高濃度DNA模板分裝，保存于-20℃或-80℃，現(xiàn)配現(xiàn)用；
3、引物或探針不佳。重新設計好穩(wěn)定的引物或探針；
4、模板中存在抑制物。模板濃度過高，根據(jù)現(xiàn)有商品化熒光定量試劑盒的要求，一般模板量以50—500ng為宜。

ct值過晚
在相對定量中，Ct值一般控制在15—25之間比較好，如果在定量中，對低拷貝數(shù)的樣品，Ct值會增大，但是一般不宜超過40循環(huán)，否則定量不準確。因此，判斷Ct值出現(xiàn)過晚是否屬于非正常情況，需要根據(jù)具體實驗設計和目的進行。
1、 擴增效率低。引物之間或者引物和探針的比例不合適，需要進行優(yōu)化；引物或探針設計不合理，需要重新設計；
2、PCR程序不合適，改用三步法進行反應，或者優(yōu)化退火/延伸溫度，可以適當降低退火溫度；退火/延伸時間短（可以在推薦的時間條件下延長10s）；
3、MgCl2 濃度不合適，增加鎂離子濃度等。PCR各種反應成分的降解或加樣量的不足；
4、PCR產(chǎn)物太長。PCR產(chǎn)物設計超過500bp；
5、模板中存在抑制物。用高純度模板進行PCR檢測或將模板進行稀釋。

熔解曲線峰不特異
熔解曲線峰不特異很有可能是以下環(huán)節(jié)存在問題：
1、引物設計不夠優(yōu)化。應避免引物二聚體和發(fā)夾結構的出現(xiàn)；引物濃度不佳，尤其是涉及二聚體存在時，適當降低引物濃度，并注意上下游引物的濃度比例；
2、模板有基因組污染。RNA提取過程中避免基因組DNA的引入，或通過引物設計避免非特異性擴增。
3、離子濃度不合適。適當降低鎂離子濃度，或選擇適合的mix試劑盒，不同試劑盒在該方面的優(yōu)化能力不適合，有些情況下可以通過換試劑盒改善結果；

陰性對照擴增有信號
照擴增有信號排查各操作環(huán)節(jié)是否有不當，造成交叉污染：
1、引物設計不夠優(yōu)化。應避免引物二聚體和發(fā)夾結構的出現(xiàn)。
2、引物濃度不佳。適當降低引物濃度，并注意上下游引物的濃度配比。
3、鎂離子濃度過高。適當降低鎂離子濃度，或選擇適合的mix試劑盒。
4、模板有基因組的污染。RNA提取過程中避免基因組DNA的引入，或通過引物設計避免非特異性擴增。
5、交叉污染。在所用的試劑中有交叉污染，或操作環(huán)境中有氣溶膠造成污染，建議對操作環(huán)境進行處理，或者換新的環(huán)境、加樣器、槍頭以及所有的引物、試劑等。

擴增曲線異常
遇到擴增曲線異常，比如“S”型曲線等等情況，有可能是以下環(huán)節(jié)存在問題：
1、模板的濃度太高或者降解；
2、熒光染料的降解；
3、在操作熒光定量PCR時，帶上新的一次性手套，蓋上避免任何指紋或者字跡等；
4、液體揮發(fā)。耗材氣密性等問題引起液體蒸發(fā)，沒有很好的聚集在管子里；
5、氣泡。操作問題如移液槍加樣引起的氣泡問題。

擴增效率低
該情況適用于針對所有的基因，特別是內參基因仍無法獲得較好的擴增信號時，應考慮如下情況：
1、反應試劑中部分成分比例是否佳，另外考慮熒光染料是否降解；
2、反應條件不夠優(yōu)化?？蛇m當降低退火溫度或改為三步擴增法，適當延長變性退火時間；
3、反應體系中有PCR反應抑制物。一般是加入模板時所引入的，應先把模板適度稀釋，再加入反應體系，減少抑制物的影響。